1、聚合物想測SEM，如何製作樣品？
既然是看膜，就需要樓主決定要看自然狀態下的膜，還是製品的膜形貌了，製品自然要按照工藝制膜。如果能夠拿到膜，可以直接用聚合物膜粘在我提到的導電膠帶上，處理方式和之前回答你的一樣，噴金、引導電膠。
2、誰能告訴我一下細胞的透射電鏡的製作步驟？
透射電鏡標本制備方法
由於電鏡電子束穿透能力的限制，必須把標本切成厚度小於0.1um以下的薄片才適用，這種薄片稱為超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。
在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。
一 取材的基本要求
組織從生物活體取下以後，如果不立即進行適當處理，會由於細胞內部各種酶的作用，出現細胞自溶現象。此外，還可能由於污染，微生物在組織內繁殖使細胞的微細結構遭受破壞。因此，為了使細胞結構盡可能保持生前狀態，必須做到快、小、准、冷：
(1)．動作迅速，組織從活體取下後應在最短時間內 (爭取在1分鍾內) 投入2.5%戊二醛固定液。
(2)．所取組織的體積要小，一般不超過1mm×1mm×1mm。也可將組織修成1mm×1mm×2mm大小長條形。因為固定劑的滲透能力較弱，組織塊如果太大，塊的內部將不能得到良好的固定。
(3)．機械損傷要小，解剖器械應鋒利，操作宜輕，避免牽拉、挫傷與擠壓。
(4)．操作最好在低溫(0℃～4℃)下進行，以降低酶的活性，防止細胞自溶。
(5)．取材部位要准確。
取材方法：將取出的組織放在潔凈的蠟版上，滴一滴預冷的固定液，用兩片新的、鋒利的刀片成「拉鋸式」將組織切下並修小，然後用牙簽或鑷子將組織塊移至盛有冷的固定液的小瓶中。如果組織帶有較多的血液和組織液，應先用固定液洗幾遍，然後再切成小塊固定。
3、超細銀粉sem制樣怎麼做
（1）對清洗過後的溶液，進行稀釋過後採用的是上清液做測試還是下層濃溶液測試（理論粒徑為50nm和200nm）
最好都測試一下，二者可能尺寸上面有區別。
（2）銀粉溶液制備成功以後，沒有立即表徵，遮光靜置幾天後，再做電鏡表徵，是否有影響
只要排除對於樣品無影響，可以。
（3）是否需要乾燥以後，取出粉末，再用乙醇溶解，取用這個溶液制樣
可以滴在導電矽片上。也可以做粉末置於導電膠上。
4、要對細菌做SEM，前處理是什麼？需要把細菌弄成干態或者固定是嗎？求詳細的步驟
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